• УЧЕБНО - МЕТОДИЧЕСКИЙ КОМПЛЕКС ДИСЦИПЛИНЫ
  • Содержание



  • страница1/4
    Дата02.11.2018
    Размер1.89 Mb.
    ТипКурсовая

    Курсовая работа (проект)


      1   2   3   4



    Министерство Образования и Науки Республики Казахстан

    Государственный Университет им. Шакарима города Семей



    Документ СМК 3 уровня

    УМКД

    042-18- 24-1.30/ 03 - 2013

    Учебно-методический

    комплекс дисциплины «Акушерство и биотехнология размножения»

    Учебно-методические материалы


    Редакция № 1.

    18.09. 2013 г.





    УЧЕБНО - МЕТОДИЧЕСКИЙ КОМПЛЕКС ДИСЦИПЛИНЫ


    «Акушерство и биотехнология размножения»

    для специальности

    5В080200 – «Технология производства продуктов животноводства»

    УЧЕБНО-МЕТОДИЧЕСКИЕ МАТЕРИАЛЫ

    Семей

    2013

    Содержание




    1

    Глоссарий




    2

    Лекции




    3

    Практические и лабораторные занятия




    4

    Курсовая работа (проект)




    5

    Самостоятельная работа студента





    Абсцесс, аdscessus, us, um (лат. Absedo,abscessum – отделяться, нарывать; гр. Аpostema, atis- нарыв, гнойник) очаговое гнойное воспаление с образованием разного размера (15-20 см и более) ограниченного фокуса, состоящего из гнойного экссудата (гнойных телец или измененных лейкоцитов и серозного экссудата) и гнойно-расплавленной тканей или гноя (лат.pus - греч.pyon - гной)

    Агглютинация agglutinatio, onis, f  ⠀(позднелат.  agglutinatio – склеивание) склеивание и   выпадение в осадок корпускулярных   частиц  -  бактерий  эритроцитов,лейкоцитов, тромбоцитов, клеток тканей под воздействием антител. Отмечают специфическую, неспецифическую и спонтанную реакции агглютинации. Р.а. специфич. Происходит в следствие применения сывороток животных, иммунизированных различными антителами, неспецифическая – в том случае, если агрегация и выпадения в осадок корпускулярных частиц происходят под влиянием изменения факторов среды (рН, концентрация солей, понижение или повышение температуры и др.). Р.а. спонтанная наблюдается в случаях, когда размножающиеся бактерии не делятся на отдельные клетки, а остаются связанными между собой в цепи или гроздьях.

    Адаптация adaptatio, onis f (позднелат. adaptatio – приспособление) приспособление организма к изменившимся условиям существования во внешней среде, выработанное в процессе эволюционного развития. При помощи механизмов А. поддерживается нормальная жизнедеятельность, организм приспосабливается к воздействию факторов среды: климатическим температурным, к гипоксии, инфекции.

    Анабиоз, anabiosis, is, f (от геч. Аnа – вновь + bios - жизнь)- состояние организма, проявляющееся почти полным, но обратимым прекращением жизненных функций. А- одна из форм приспособительных реакций к неблагоприятным условиям внешней среды. При изменении температуры или влажности защитная реакция может наступить в виде гипобиоза. При А. повышается устойчивость организма к неблагоприятным факторам (кислородному голоданию, интоксикации и др.), действию ионизирующего излучения.

    Анамнез, anamnesis, is, f (rp. Anamnesis - воспоминание) – савокупность сведений о больном животном и развитии болезни для установления диагноза и прогноза болезни, выбора оптимальных методов ее лечения и профилактики. В анамнез включаются сведения о животном, характеризующае его состояние перед болезнью – А.vitae, и сведения о течении болезненного процесса –А. morbi.

    Aномалия, аnomalia, ae, f (rp. аn –отрицание + homalogos - равный, одинаковый) – ненормальность, неправильность, отклонение от нормальности; врожденный дефект структуры.

    Баланит , balanitis, tibis, f (rp. Balanos – головка полового члена + itis - воспаление) воспаление кожи головки полового члена.

    Баланопостит, вalanopostitis, tidis, f (rp. Balanos + poste, лат. Praeputium – кожная складка вокрух головки полового члена+ гр. itis – воспаление) воспаление кожи головки полового члена и препуциального мешка.) Различают серозный, геморрагический, фибринозный, гнойный, острый, и хронический. Б. возникают на почве трам и ссадин, загрязнения и инфицирования, при виброзе, трихомонозе, везикулярной сыпи. Наблюдается у всех видов самцов.

    Вагинит, vaginitis, tidis, f; colpitis, tidis, f ( лат. Vagina влагалище гр. сolpos- влагалище

    Кольпит воспаление влагалища, обычно сочетается с воспалением преддверия – вестибулит, вестибуло-вагинит. В. бывает серозный, катаральный, гнойный, флегматозный,фибринозный, некротический; острый хронический. Возникает после травмы после родов, случки, искусственного осеменения, а также при виброзе, др. инфекциях и инвазиях.

    (Vestibulitis et vaginitis)

    Выворот и выпадение, есtropium (rp. ek- вон+trope- выворачивание наружу; лат. inversio –выворо, поворот лат. рrolapsus – выпадение) – частичное или полное выпадение выпячивание (выворот) или выхождение (выпадение) внутреннего органа или его части на поверхность тела через естественное отверстие или рану.

    Выпот, еffusio, onis, f (лат. излияние, истечение) – скопление жидкости (экссудата или транссудата) в серозной полости.

    Оофорит, oophoritis, tidis, f (rp. оophoron-яичник) – воспаление яичников. Возникает как осложение при воспалении матки и брюшины при отдавливании желтого тела Виды: острый (чаще гнойный) и хронический (паренхиматозный и интерстициальный). У кур проявляется развитием желточного перитонита.

    Параметрит, parametritis, tidis, f

    Введение.

    1 . Значеие изучение дисциплины

    Интенсификация воспроизводства животных и получение от них продукции высшего качества — основные задачи зоотехнической и ветеринарной науки. Важная роль в решении этих вопросов принадлежит «Акушерство и биотехнология размножения».

    Одно из главных условий дальнейшего развития животноводства, улучшения качества и снижение себестоимости продукции - полноценное кормление.

    Акушерство и биотехнология размножения животных — раздел, рассматривающий норму и патологию оплодотворения, беременности, родов и послеродового периода кобыл. Акушерство и биотехнология размножения сельскохозяйственных животных основана на учении о половых циклах, оплодотворении и беременности, использовании естественного и искусственного осеменения, пересадки зародышей.

    2 Роль дициплины в подготовке ветеринарных специалистов

    Основная роль в изучении дисциплины «Акушерство и биотехнология размножения животных» является приобретение глубоких теоретических знаний и практических навыков биотехнике размножения.

    Изучение курса позволит специалисту разрабатывать и осуществлять необходимые средства, способы и мероприятия по выполнению профилактической работы, разрабатывать новые биотехнологические способы размножения животных.

    В настоящее время акушерство и биотехнология размножения, как искусственное осеменение оформились в важную отрасль в зоотехний и клинической ветеринарии, обогащенную теорией и комплексом диагностических и терапевтических приемов, широко применяемых в животноводческой практике.

    Акушерство относится к дисциплинам, завершающим ветеринарное и зоотехническое образование. Эта отрасль знаний строится на базе анатомии, гистологии, эмбриологии, биохимии, нормальной и патологической физиологии, микробиологии, общей и оперативной хирургии и на базе других общетеоретических и практических дисциплин, на основе его мы развиваем «Акушерство и биотехнологии размножения»

    После Октябрьской революции И. И. Иванов широко развернул научно-исследовательскую ра­боту по искусственному осеменению скота и птиц; организовал ряд лабораторий: централь­ную станцию по размножению животных при Наркомземе, лабораторию физиологии размно­жения, решением президиума ВАСХНИЛ реор­ганизованную в 1931 г. в лабораторию искусст­венного осеменения животных Всесоюзного на­учно-исследовательского института животно­водства.

    И.И.Иванов заложил теоретические основы и принципы почти всех существующих приемов искусственного осеменения животных. Совре­менные методы получения, разбавления, сохра­нения спермы, по существу, являются усовер­шенствованием и развитием тех методов, которые впервые применил И.И.Иванов. В процессе совершенствования метода ис­кусственного осеменения было разработано много технических приемов. Изобретение в 1931г. Н.В. Комиссаровым, В.И.Липатовым и И. И. Родиным искусственной вагины явилось ценнейшим усовершенствованием метода искус­ственного осеменения сельскохозяйственных жи­вотных всех видов. Методы получения спермы при помощи искусственной вагины известны в мировой литературе как русские методы. Даль­нейшие исследования отечественных ученых по­зволили решить ряд новых проблем: оценка и раз­бавление спермы, сохранение и транспортировка ее. Разработаны способы замораживания спермы. А. Д. Бернштейн и В. В. Петропавловский (1936) впервые в мире доказали необходимость приме­нения глицерина при замораживании спермы.

    Краткая характеристика истории дисциплины Возникновение простейших приемов ветеринарного родовспоможения относится к глубокой древности. В первобытном родовом обществе, конечно, не было теоретически обоснованных способов акушерской помощи животным. Но у скотоводов складывался жизненный опыт в этой области. «Акушерский» опыт постепенно стал концентрироваться у определенных людей, которые передавали свои знания из поколения в поколение. Так постепенно создавалась каста знахарей, занимающихся лечением больных животных.

    В период развития рабовладельческого строя и в период феодализма для обслуживания конского состава армий, а также скота крупных животноводческих хозяйств возникла потребность в подготовке зоотехнических, ветеринарных специалистов. В первых ветеринарных школах учебными планами предусматривалось изучение техники родовспоможения, как особого раздела ветеринарной хирургии. Однако практическая деятельность ветеринарных специалистов в области акушерства имела ограниченное значение. Помощь животным при родах по-прежнему в основном находилась в руках конюхов, скотников и знахарей.

    В арабской летописи отмечается, что в 286 г. бедуин из Северной Африки, не имея возможности получить приплод от жеребца, принадлежащего его сопернику, ввел во влагалище одной из кобыл, пасшихся вместе с этим жеребцом, пучок конских волос, извлек его после коитуса, быстро перевез и ввел во влагалище своей кобылы и таким образом искусственно осеменил ее.

    В период развития капитализма ветеринарное акушерство начало оформляться в самостоятельную научно-практическую дисциплину; появились научные работы и учебные пособия по ветеринарному акушеству, а в учебных заведениях выделились специальные курсы и даже кафедры.

    В России эти изменения произошли в конце прошлого и начале текущего столетия. На протяжении многих лет наши ветеринарные специалисты изучали акушерство по руководствам Сен-Сира и Виоле, Франка и Гермса. «Руководство к ветеринарному акушерству» (F. Saiat-Cyr, Th. Violet, Traite d'obstetrique veterinaire, P., 1875, рус. пер., Харьков, 1891); Наличие этих хороших для того времени учебников в оригинале и в переводах в сочетании с широким рекламированием всего иностранного при недооценке и даже игнорировании достижений отечественных специалистов препятствовало обобщению и популяризации научно-практических достижений отечественных ветеринарных специалистов, работавших в области акушерства.

    Лекция №2.

    Физиологические основы и методы получения спермы .

    Методы получения спермы от производителей 
    Устройство и подготовка исскуственной вагины к работе
    Получение спермы посредством искусственной вагины

    Влагалищные методы получения спермы

    1 Методы получения спермы от производителей 

    При выборе метода получения спермы следует ориентироваться на такой, который отвечает следующим основным требованиям:

    1) позволяет получать весь эякулят без всяких потерь;

    2) не снижает коли­чества и жизнеспособности спермиев;

    3) гарантирует здоровье производителей от травм и особенно от инфекционных заболеваний;

    4) прост технически, выполним в производственных условиях без сложного оборудования;

    5) обеспечивает стерильность получения спермы.

    Все существующие методы получения спермы можно разделить на:

    1) уретральные, позволяющие получать сперму непосредственно из уретры самца, и

    2) влагалищные, заключающиеся в собирании спермы из влагалища самки после ее естественного осеменения.

    Уретральные методы получения спермы. Русский метод получения спермы изобретен в 1931 г. Н. В. Комисаровым, В. И. Липатовым, И. М. Родиным. Сущность его заключается в получении спермы на искусственную вагину, позволяющей воспроизводить механические и термические раздражениие нервных окончаний полового члена производителя и получать от него полноценный эякулят.

    3 Устройство и подготовка исскуственной вагины к работе

    Искусственная вагина представляет собой прибор, состоящий из цилиндра, изготовленного из жести, резины или эбонита, в просвет которого вставлена эластическая резиновая трубка. Концы резиновой трубки завернуты на конце цилиндра, благодаря чему между внутренней поверхностью цилиндра и наружной поверхностью резиновой трубки образуется замкнутое пространство, сообщающееся с внешней сре­дой через патрубок, предназначенный для вливания воды и надувания воздуха между стенками цилиндра и резиновой трубки. Один конец искусственной вагины остается открытым, а на другой укрепляют спермоприемник для собирания спермы. Конструкция искусственных спермоприемников имеет значительные вариации в зависимости от вида животных..

    Искусственная вагина для жереб­ца состоит из алюминиевого цилиндра, суживающегося впереди и оканчиваю­щегося горловиной, на которую заво­рачивают передний конец резиновой камеры и надевают спермоприемник в виде широкого резинового стакана. В середине цилиндра имеется патру­бок с завинчивающейся металлической пробкой. Путем отвинчивания и завинчивания пробки можно регулировать давление в полости искусственной вагины. Сбоку к ци­линдру прикреплена ручка для удобства фиксации вагины. При полу­чении спермы в холодном помещении на вагину надевают чехол.

    Искусственная вагина для быка имеет цилиндр из толстой резины и эластичную камеру, концы которой завернуты на концы цилиндра. Концы резиновой камеры на цилиндре закрепляются резиновыми кольцами.

    Для наполнения вагины водой и воздухом на цилиндре имеется патрубок, в который вставлен эбонитовый краник. На одном из концов искусственной вагины фиксируется резиновым держателем стеклянный двустенный спермоприемник. модели приборов, но все они построены по одному принципу.

    Искусственная вагина для барана имеет эбонитовый цилиндр и не содержит специальных колец для фиксации резиновой камеры, концы ее прочно удерживаются на цилиндре самостоятельно. Отверстие па­трубка, находящегося на середине цилиндра, широкое, и в него встав­ляется резиновая пробка с эбонитовым краником.

    Искусственная вагина для хряка. Для получения спермы от хряков пользуются укороченной искусственной вагиной, применяемой для бы­ков, или одной из моделей А. В. Квасницкого. Укорочение искусствен­ной вагины, предназначенной для быков, производят с учетом длины пениса хряка. При слишком короткой вагине наступает торможение половых рефлексов, а при длинной — потеря спермы (ее обратное вы­текание). Поэтому необходимо производить индивидуальный подбор длины цилиндра. Спермоприемником служит темная широкогорлая стеклянная банка емкостью 500 мл с пластмассовым фильтром, кото­рый можно заменить сложенной вдвое стерильной марлей. Спермопри­емник присоединяют к вагине с помощью отрезка резиновой камеры, на котором сверху делают отверстие диаметром около 3 мм для нагнетания воздуха из спермоприемника в момент наполнения его спермой. На спермоприемник надевают ватный или поролоновый чехол. В последнее время стали использовать разовые спермоприемники из полиэтиленовой пленки. Их применение наряду с другими мероприятиями снижает микробную загрязненность спермы.

    3 Получение спермы посредством искусственной вагины. 

    У живот­ных всех видов метод искусственной вагины позволяет получать спер­му двумя путями:

    1) на живую самку, самца или кастрата

    2) на чу­чело.

    Сперму «на самку» получают в обстановке, обычно создаваемой при естественном осеменении. Корову и овцу лучше помещать в станке. В момент садки техник держит подготовленную вагину справа на уровне таза самки, направляет половой член производителя в отвер­стие искусственной вагины и удерживает последнюю до конца эякуля­ции. При получении спермы на искусственную вагину требуется опре­деленный навык. Нельзя подставлять вагину к головке полового члена преждевременно или, наоборот, поздно, так как это обусловливает торможение эякуляции. Вагину следует подставлять в тот момент когда половой член производителя приближается к крупу самки. При этом у быка и барана левой рукой через препуций слегка отводят половой член в сторону.

    Делать это надо осторожно, чтобы не вызвать болевых ощущений. В половом члене быка много чувствительных нервных окончаний, и они сосредоточены главным образом в головке пениса. Одни из них, так называемые колбы Краузе, воспринимают температурные раздражения. При этом поверхностно лежащие колбы Краузе возбуждаются под влиянием холода, а глубоко лежащие — под воздействием тепла. Другие нервные окончания — Фатер-Пачиниевы тельца — воспринимают давление; находятся в висцеральном листке препуция. Имеются еще тельца Мейснера, являющиеся органами осязания, и нервные чувствительные окончания, воспринимающие боль. Возбуждение тех и других телец, а также холодочувствительных нервных окончаний тормозит проявление совокупительного рефлекса и эякуляции. У хряка и жеребца в отличие от быка и барана эякуляция происходит в результате соответст­вующих раздражений нервных окончаний не только головки, но и основания полового члена.

    В момент эякуляции у крупного и мелкого рогатого скота искусст­венная вагина должна располагаться под углом 35—45° по отношении к горизонтальной плоскости. У животных других видов уклон может быть меньше. Слишком большие уклоны вагины вверх, вниз и в сторо­ны могут травмировать половой член.

    При получении спермы вместо коров можно использовать ваши или быков (менее желательно), а вместо овец — валухов или баранов. Эти животные во избежание торможения половых рефлексов у производителя, профилактики поражений связочного аппарата тазовых конечностей должны быть ниже производителя (для быка примерно 10 см) и с нешироким крупом.

    От производителей всех видов сельскохозяйственных животных можно получать сперму в искусственную вагину.

    Искусственную вагину располагают сбоку чучела так же, как и при получении спермы на живую или чаще всего помещают вагину внутри чучела в тазовой полости. Для усиления половых рефлексов, получения большего и лучшего качества спермы от быков-производителей пользуются передвижным челом конструкции П. И. Пакепаса.

    По окончании эякуляции искусственную вагину поворачивают спермоприемником вниз, открывают краник, чтобы выпустить обеспечить стекание спермы в спермоприемник. Затем сперме отделяют от вагины и немедленно передают его в лаборатормю, вагину — в моечную. Сперму хряков обычно получают на чучело. Предложено много чучел различных конструкций. Удобным оказалось деревянное чучело модели А. В. Квасницкого с откидной спинкой. Внутри чучела размеще­ны электрическая вагина со спермоприемником и две электролампоч­ки, поддерживающие определенную температуру. Чучело укреплено на деревянной площадке.

    Имеется металлическое чучело конструкции В. Б. Дорошкова. Его достоинством является возможность обогревания задней части и из­менения угла наклона искусственной вагины. Поэтому создаются наи­лучшие условия для процесса эякуляции.

    Данное чучело легко поддается механической очистке, мойке, суш­ке и дезинфекции. Проходят производственное испытание два вариан­та металлических чучел: со съемным и обычным вагинодержателем.

    При получении спермы у жеребца вагину нужно крепко дер­жать у таза кобылы, чтобы создать нужный упор для полового члена. Вследствие сильного увеличения объема полового члена во время эрекции головки создается опасность разрыва камеры. Поэтому при чрезмерном повышении давления в вагине открывают краник или отвер­тывают немного винтовую пробку, выпускают часть воздуха и воды и вновь завинчивают пробку. Давление в вагине следует изменять на ос­нове учета индивидуальных реакций жеребца.



    Правила получения спермыПолучают сперму от производителей в условиях теплого, светлого, просторного манежа и идеальной чисто­ты. За 1,5—2 ч до получения спермы в манеже и лаборатории включа­ют бактерицидные лампы, что уменьшает микробную и грибковую загрязненность спермы. Производителей, чучело или животное, на кото­рое берут сперму, тщательно чистят, используют поролоновые наклад­ки на искусственную вагину, применяют зоогигиенические фартуки. При чистке производителей особое внимание обращают на нижнюю часть живота, область препуциального отверстия, которую обмывают теплым 2%-ным раствором соды, фурацилином 1:5000. В теплое вре­мя года быков, хряков и жеребцов моют под душем. Некоторые специ­алисты рекомендуют полость препуция у быков промывать различны­ми дезинфицирующими растворами. Однако следует иметь в виду, что дезинфицирующие вещества при длительном их применении уменьша­ют бактерицидные свойства слизистой оболочки препуция. На стан­циях искусственного осеменения в ряде стран полость препуция у бы­ков перед получением спермы не промывают.

    Чтобы не допустить несчастных случаев при получении спермы от производителей, особенно от быков и жеребцов, в манеже устраивают заградительные столбы. Лицам, получающим сперму от производите­лей, не следует присутствовать при ветеринарно-санитарных обработ­ках, особенно таких, которые причиняют животным" боль. Вообще в станке и манеже, предназначенных для получения спермы, запрещается проводить ветеринарные мероприятия (туберкулинизация, взятие крови и др.), так как при этом у производителей возникают условные тормозные рефлексы на станок или манеж. Производителям всех ви­дов животных перед получением спермы следует обязательно предо­ставлять проводку, что усиливает проявление половых рефлексов. Для улучшения качества эякулята в некоторых странах на станциях ис­кусственного осеменения перед получением спермы быка сильно воз­буждают коровой. Особенно хорошие результаты получаются при ис­пользовании самки в охоте. Макмилан и Фильден установили, что воз­буждение быка в присутствии коровы в охоте увеличивает объем по­лучаемой спермы на 18,4—18,9% по сравнению с объемом, получаемым при использовании для возбуждения той же коровы при отсутствии охоты. Половое возбуждение быка в течение 6—10 мин является важ­ным средством улучшения качественных показателей спермы (увели­чение объема, концентрации, уменьшение микробных тел и др.) и оплодотворяющей способности (Т. Стоянов).

    Искусственную вагину для получения спермы у производителей не­обходимо правильно собрать и подготовить. Новую камеру тщательно моют горячей водой с содой, чтобы удалить сернистые соединен. После высушивания камеру натягивают на цилиндр так, чтобы гла.1-кая ее поверхность была обращена внутрь, а неровная — к цилиндру. Внутренняя трубка искусственной вагины должна быть равномерно натянута на основной цилиндр. Слабое или слишком сильное натяжение трубки, перекручивания ее могут нарушить коитус. Искусственную вагину надо приготовить так, чтобы воспроизвести естественные условия при коитусе (температуру, давление, скользкость и др.).

    Каждый раз перед употреблением искусственную вагину обеззараживают в соответствии с действующей инструкцией по проведению ис­кусственного осеменения. Если после обеззараживания внутренняя поверхность вагины остается влажной, ее досуха протирают стерильной ватой или хорошо проутюженной салфеткой. Очень быстро и надежно стерилизация вагины достигается в паровом стерилизаторе конструкции В. А. Пасечника. В стерилизаторе 50 л воды закипает за 15— 17 мин. Стерилизация паром при температуре 100° 60 вагин и 80 спермоприемников проводится за 1,5—2 ч.

    Разовые спермоприемники из полиэтиленовой пленки вместе с искусственными вагинами стерилизуют автоклавированием.

    Для заполнения вагины готовят воду, подогретую до 60—70е. Перед использованием вагины температуру проверяют химически метром, вводимым в просвет внутренней трубки. Постоянную туру в подготовленной искусственной вагине удобно поддерживать помещением ее в шкаф-термостат. При получении спермы тем вагины должна быть в пределах 40—42°.

    Для смазывания внутренней стенки вагины используют простерилизованный на водяной бане чистый белый или желтый вазелин. Одна­ко от вазелина резиновая камера быстро разрушается, ее эластичность уменьшается. Поэтому после получения спермы необходимо как можно быстрее очистить вагину от вазелина. Необходимо тщательно следить за тем, чтобы внутренняя поверх­ность искусственной вагины была смазана по всей ее длине, за исклю­чением конца, который оставляют на 3—4 см несмазанным, чтобы он лучше зажимал спермоприемник. Особое внимание уделяют чистоте слермоприемника. Его каждый раз тщательно моют раствором соды и чистой водой. Перед употреблением спермоприемник стерилизуют в автоклаве или кипятят, а затем ополаскивают свежепростерилизованным физиологическим раствором хлористого натрия.

    Объем эякулята быка и барана очень мал. Поэтому для предотвра­щения гибели спермиев от температурного шока при получении спермы необходимо иметь теплый, лучше стеклянный двустенный спермопри­емник. Межстенное пространство спермоприемника для быка вмещает 100 мл, а для барана—50 мл воды. Вода должна быть подогрета до 30—35°.

    При накачивании в вагину воздуха надо нагнетать его столько, что­бы выходное отверстие ее было полностью закрыто, а полость окружена упругими, напряженными, ровными (без складок) стенками. При недостаточном давлении эякуляция протекает вяло. Слишком сильное дав­ление, затрудняющее введение полового члена в вагину, может нару­шить эякуляцию: она нормально протекает у барана при давлении в ва­гине 40—60 мм ртутного столба.

    При получении спермы следует учитывать индивидуальные особен­ности производителей, их разную степень реактивности. Одних быков сразу подводят к самке или чучелу, других предварительно выдержива­ют, не допуская к станку в течение 3—5 мин, и т. д.

    Техник должен учитывать индивидуальные особенности производи­телей с целью получения максимального количества и лучшего качест­ва спермы.

    У хряков эякуляция нарушается или совершенно не происходит, если давление воздуха в искусственной вагине ослабевает. Поэтому после накачивания воздуха в искусственную вагину ее надо проверить; в ней не должно быть утечки воздуха или воды.

    Каждый раз по окончании работы, и особенно когда при получе­нии спермы произошли соскакивание или разрыв камеры, необходимо проверять наличие всех резиновых деталей вагины. Слетевшие с вагины резиновые кольца или оторвавшиеся части резиновой камеры могут на­деться на половой член и пережать его вплоть до некроза.

    После получения спермы воду из вагины выливают и тщательно отмывают теплым раствором или щелоком ее стенки от остатков спермы и смазки. Обмытую вагину ополаскивают чистой водой и хранят в су­хом состоянии.

    Стерильной салфеткой протирают препуций, на волосках которого в момент коитуса в искусственную вагину может оставаться вазелин. К нему прилипают различные механические примеси, вызывая баланопостит. Часто это бывает у быков, когда в качестве подстилки использу­ют опилки. Поэтому опилки применять нельзя.

    Метод получения спермы на вагину наиболее распространен в прак­тике искусственного осеменения и считается лучшим из всех существую­щих методов как по простоте техники, так и по качеству и количеству получаемой спермы.


    Фистульный метод получения спермы представляет большой теоре­тический и практический интерес. При этом методе значительно упро­щается вся работа по подготовке и получению спермы, а самое главное, удается получать идеально чистую, стерильную сперму, обладающую высокой переживаемостью. При использовании такой спермы достига­ется повышенная оплодотворяемость. Производителей с уретральной фистулой можно использовать долгие годы.

    Для получения спермы через фистулу проводят промежностную уретростомию. Впервые эту операцию предложил в 1923 г. проф. Л. С. Сапожников при заболеваниях полового члена у жеребцов. Позд­нее И. В. Глумаков начал применять эту операцию для получения спер­мы у быков, а в 1936—1938 гг. ее широко использовал в коневодческой практике X. И. Животков.



    Получение спермы посредством спермособирателей. Спермособиратели для жеребцов и быков сконструированы А. А. Зальцманом и В. К. Миловановым. Спермособиратель представляет собой прибор, со­стоящий из тонкой резиновой трубки, один конец которой наглухо за­крыт, а свободный конец растянут на широком резиновом кольце. По­средством спермособирателя сперму получают двумя способами: 1) без введения его во влагалище и 2) с введением во влагалище самки.

    Получение спермы методом мастурбации — путем механического раздражения головки полового члена трением о нее препуциального мешка. Этот метод дает хороший эффект только у собак. Практика по­казала, что у собак быстро развивается рефлекс на мастурбацию, в си­лу которого при помещении собаки на стол и уже при подготовке к мастурбации у животного появляется эрекция, а после нескольких со­прикосновений препуция с головкой полового члена происходит эякуля­ция. У копытных животных этим методом получать сперму не удается

    Получение спермы методом массажа. У быка перед получением спермы волосы на препуциальном мешке подстригают. Без предварительного контакта производителя с коровой (без возбуждения) получить сперму не удается. Поэтому быка подводят к корове для общего возбуждения, под влиянием которого сперма из придатка семенника передвигается в ампулы спермиопровода. После этого руку, обильно смазан­ную вазелином, вводят в прямую кишку быка — за ампуловидное ее расширение, а затем отводят назад вместе со свободно перемещающимся участком прямой кишки в тазовую полость, где нащупывают шейку мо­чевого пузыря и расположенные кпереди ампулы спермопроводов, в форме утолщенных шнуров, и пузырьковидные железы. Простым поглаживанием рукой их содержимое выдавливают и по мере выделения собирают в стеклянный сосуд или в обычный спермоприемник.

    Метод электроэякуляции. В лаборатории искусственного осеменения Украинского научно-исследовательского института животноводства степных районов имени М. Ф. Иванова «Аскания-Нова» был разработан метод электроэякуляции у баранов и козлов. Самцу, укрепленному в станке, вводят через прямую кишку серебряный электрод и располага­ют над мочевым пузырем. Вторым электродом служит пинцет Пэана, слагаемый на верхушку мошонки. Источником тока служит батарея. После установки прибора замыкают и размыкают электроцепь сначала короткими импульсами, а потом дают несколько удлиненных импульсов. Под влиянием электротока ампулы спермиопроводов сокраща­ется и находящиеся в них спермин выделяются. В настоящее время предложены методы электроэякуляции у живот­ных разных видов (быков, баранов, кроликов, птиц).

    Влагалищные методы получения спермы.

    Губочный метод получения спермы предложил И. И. Иванов и в первые годы при­менения искусственного осеменения был самым распространенным. Его применяли для получения спермы от быков, баранов и жеребцов. Для свиней он оказался совершенно непригодным, так как вследствие узости вульвы и вагины во влагалище свиньи можно ввести только небольшую губку, которая не может впитать в себя весь эякулят. В настоящее вре­мя губочный метод в практике искусственного осеменения не применя­ется. Сущность метода заключается в использовании губки, которую пос­ле соответствующей обработки вводят во влагалище самки, находящей­ся в состоянии половой охоты, а затем допускают коитус с производите­лем. После эякуляции губку извлекают из влагалища, а эякулят, выде­лившийся во время полового акта и впитавшийся в губку, отжимают руками или специальным прессом. У свиней Е. Ингер и Н. Н. Михайлов предлагают получать сперму после введения стерильного тампона в переднюю часть влагалища. В этом случае во время эякуляции сперма вытекает из вульвы.

    Влагалищный метод получения спермы предельно прост по техни­ке, но он не применяется ввиду следующих недостатков:

    1) сперма те­ряется в складках слизистой оболочки влагалища;

    2) эякулят загряз­няется влагалищной слизью, что снижает качество спермиев;

    3) так же как и губочный, этот метод не исключает возможности распространения инфекции через сперму.

    Лекция №2.Вопросы для самоконтроля



    Лекция №3. Физиология и биохимия спермы.

    1 Химический состав спермы



    Сперма содержит 90-98% воды и 2-10% сухого вещества. Около 60% сухого вещества представляет белок. Главные составные части спермы – белки и липиды. В состав белка входят аминокислоты, содержащие серу. Сперма быка и барана богата сахарами, из которых преобладает фруктоза. В сперме содержатся лимонная кислота, свободные аминокислоты, сорбитол, инозитол.

    В сперме широко представлены биологически активные вещества: ферменты (кислая и щелочная фосфатаза, гиалуронидаза, глюкозидаза, амилаза, липазы, протеазы, оксидазы и др.),

    антагглютинины, простагландины, гормоны (андрогены, эстрогены), витамины (аскорбиновая кислота, тиамин, рибофлавин, ретинол).

    В сухом веществе спермы содержится около 1% золы. Зольная часть содержит фосфор, кальций, магний, калий, натрий, хлор, цинк, железо, медь и ряд других элементов.

    Название вопроса 2 Строение спермиев



    Спермий имеет микроскопически малую величину. Общая длина спермии составляет 60-70 мкм. Различают 5 поперечных участков спермия: головку, шейку, тело (средняя часть), жгутик (хвост) и концевой участок жгутика. Головка имеет длину 8-10 мкм, шейка – 1, средняя часть – 8-10, жгутик – 35-50, концевой участок жгутика – 3 мкм. На головку приходится 49% массы спермия, тело – 15, хвост – 36%. Головка является носителем генетического материала; шейка, тело и хвост – двигательная (локомоторная) часть спермия.

    Головка представляет собой выпукло-вогнутую пластинку. Форма головки у барана и быка суживается к шейке, у хряка и жеребца – равномерно овальная. Головка состоит из акросомы (в виде двухслойного колпачка, прикрывающего передние 2/3 головки);

    системы перекрещивающихся фибрилл, образующих каркас оболочки; бокаловидной капсулы;

    кольцевого основания.

    Свыше половины массы головки составляет ядро. Хроматиновый материал ядра сконцентрирован преимущественно в нижней части головки.

    Шейка является связующим звеном между головкой и средней частью. Это наиболее слабая, легкоповреждаемая часть спермия. В ней расположена проксимальная центриоль (центросома), исполняющая роль локомоторного центра. От нее берет начало осевая нить, состоящая из двух прочно спаянных между собой фибрилл. Осевая нить проходит по всей длине локомоторной части спермия, постепенно истончаясь.

    Проксимальная центриоль окружена двумя базальными гранулами, имеющими вид колец элипсоидной формы. От каждой базальной гранулы отходит по 9 тонких волоконец – фибрилл, причем фибриллы наружного кольца в несколько раз толще соответствующих им фибрилл внутреннего кольца. Фибриллы соединены между собой и с осевой нитью тонкими нитями – спицами. Кольцевые фибриллы содержат сократительные белки (скантин, спермозин), сходные по своему составу с актомиозином. При сокращении фибрилл хвост изгибается, причем одни фибриллы изгибают хвост вправо, другие – влево. Фибриллы опоясаны спиральными элементами. Тело плотно обвито двойной спиралью; последняя заканчивается кольцевой центриолью, расположенной на границе тела и хвоста спермия. Хвост по всей длине, за исключением концевой части, опоясан тройной спиралью. Спиральные элементы придают жгутику прочность, не лишая его гибкости. В области тела они имеют митохондриальное происхождение. В митохондриях сосредоточены ферменты гликолитического и окислительного характера, участвующие в выработке энергии для движения спермиев. Спермии покрывает цитоплазматическая мембрана. Благодаря наличию в ее составе серосодержащих аминокислот (цистин, цистеин) она устойчива к протеолитическим ферментам, щелочным и кислым растворам.

    Спермии обладают подвижностью, которая необходима для достижения ими места оплодотворения и проникновения в глубь яйцеклетки.

    Движение спермиев осуществляется в результате последовательных сокращений и расслаблений боковых фибрилл. Эти движения координируются импульсами, поступающими через осевую нить от проксимальной центриоли. В результате хвост спермия совершает хлыстообразные удары. При каждом ударе хвоста головка, обладая неустойчивостью в поперечном направлении, совершает поворот вокруг оси, что обеспечивает винтообразное движение спермия по прямой линии.

    Скорость поступательного движения спермиев зависит от температуры, рН, вязкости среды и других факторов. При оптимальных условиях спермий движется со скоростью 5-6 мм/мин.

    Важная особенность спермиев – способность к реотаксису, т.е. ориентированному движению против тока жидкости. Реотаксис играет большую роль в механизме сближения спермиев с яйцом.

    3 Энергетика спермиев



    Главное отличие спермиев от других клеток – их способность к энергичному, активному движению за счет энергии движения и гликолиза. Спермии являются факультативными анаэробами, т.е. могут жить и двигаться как в присутствии кислорода, так и в бескислородной среде.

    Дыхание – основной биохимический процесс, обеспечивающий спермиев необходимой энергией для движения. Около 90% всей энергии спермии получают за счет дыхания. В процессе дыхания под влиянием кислорода окисляются углеводы, липиды, белки и жиры.

    Прежде всего, окисляются простые сахара: фруктоза, глюкоза, затем другие вещества.

    В результате дыхания образуются углекислота, вода и аммиак (при окислении белков), и выделяется большое количество энергии. При распаде одной грамм-молекулы фруктозы выделяется 680 тыс. малых калорий.

    При отсутствии кислорода источником энергии является сахар (фруктоза и глюкоза), который усваивается путем гликолиза и фруктолиза.

    Конечным продуктом фруктолиза является молочная кислота. За счет фруктолиза спермии получают около 10% энергии.

    Таким образом, фруктолиз служит лишь вспомогательным источником энергии.

    Действие факторов внешней среды на спермии (температура, осмотическое давление, рН среды, химические вещества, свет и др.)

    Повышение температуры до 40°С заметно активизирует спермиев, но при этом резко сокращается срок их жизни. При температуре 45°С спермии утрачивают оплодотворяющую способность вследствие инактивации ферментных систем, а при температуре 48°С погибают. Постепенное понижение температуры замедляет движение спермиев, поскольку тормозятся дыхание и фруктолиз. При температуре 15°С движение становится колебательным, а после охлаждения до 5°С оно прекращается (температурный анабиоз). Спермии не обеспечены защитными средствами против действия света. Прямые солнечные лучи убивают их за 20-40 мин. Неблагоприятен и сильный электрический свет. Рассеянный свет не оказывает вредного воздействия. Свежеполученная сперма быка и барана имеет нейтральную или близкую к нейтральной (рН 6,7-7,0) реакцию, хряка и жеребца – слабощелочную (рН 7,2-7,6). Накопление водородных ионов тормозит процессы жизнедеятельности спермиев. При рН 6,3-6,4 наступает кислотный анабиоз. Дальнейшее увеличение кислотности вызывает гибель спермиев.
    Сдвиг рН в щелочную сторону вначале активизирует спермиев, но при рН 7,8-8,0 наступает их гибель.

    У сельскохозяйственных животных осмотическое давление спермы находится в пределах от 7,6 до 9,0 атм. (695 кПа).

    Спермии, помещённые в среду с меньшим осмотическим давлением (гипотонические растворы), набухают, помещенные в среду с повышенным осмотическим давлением (гипертонические растворы) – сморщиваются; в том и другом случаях быстро наступает их гибель.

    Ионы электролитов, находящиеся в плазме и в самих спермиях, могут оказывать на спермиев разнообразное действие: уплотнять или разрыхлять оболочку спермия; нейтрализовать электрический заряд; изменять проницаемость мембран, тормозить или, наоборот, активизировать метаболические процессы.

    Электролиты состоят из катионов и анионов. Одно - и двухвалентные катионы существенно не изменяют выживаемость спермиев.

    Анионы оказывают более сильное влияние, чем катионы, причем действие анионов зависит от валентности. Анионы хлоридов разрыхляют оболочку спермиев и разрушают липопротеидный покров. Анионы фосфатов, сульфатов, цитратов, наоборот, уплотняют оболочку спермиев и стабилизируют электрический потенциал.

    Большинство химических соединений для спермиев токсичны. Из неорганических веществ особенно ядовиты соли и окислы тяжелых металлов (ртуть, свинец), поскольку они блокируют ферментные системы спермиев. Вредно действуют на спермиев окислы цинка, алюминия, железа, меди, серебра; поэтому в практике искусственного осеменения пользуются стеклянными, пластмассовыми, хромированными, никелированными инструментами.

    Пары летучих органических веществ (лизол, креолин, скипидар, формалин, нашатырный спирт, эфир, йодоформ, ксероформ) губительно действуют на спермиев даже на расстоянии.

    Чрезвычайно сильно действуют на спермиев детергенты (моющие средства), неорганические кислоты (серная, соляная, азотная), ряд органических кислот (уксусная, молочная, масляная), окислители (йод, хлор, калия перманганат, перекись водорода).

    Температурный шок спермиев и меры его предупреждения
    Если сперму быстро охладить, то произойдет гибель значительной части спермиев. Такое явление носит название «холодовый шок спермиев». Он начинает проявляться уже при охлаждении спермы от 40°С до 30°С, но наиболее выражен в диапазоне температур от +5°С до +15°С.

    При холодовом шоке повреждаются мембраны спермия, митохондрии, фибриллы, нарушается ионное равновесие, синтез АТФ.

    Наиболее эффективным защитным средством от температурного шока спермиев является желток куриного яйца. Механизм защитного действия желтка состоит в том, что содержащийся в нем лецитин легко адсорбируется на поверхности спермия, что делает цитоплазматическую мембрану более прочной и менее поддающейся деформации при воздействии резких температурных перепадов. Дополнительным средством предупреждения температурного шока спермиев может служить медленное охлаждение спермы до +2…+4°С, при этом спермии успевают адаптироваться к более низким температурам.

    Естественный и искусственный анабиоз спермиев

    Неподвижное состояние спермиев, при котором они сохраняют жизнеспособность, называется анабиозом.

    В хвосте придатка семенника поддерживается слабокислая реакция среды (рН 6,3-6,4), благодаря чему спермии находятся в состоянии естественного анабиоза.

    Длительному сохранению жизни спермиев, помимо этого, способствуют пониженная температура, вязкий секрет канала придатка, плотное расположение спермиев, обильное снабжение питательными веществами и быстрое удаление продуктов метаболизма. В хвосте придатка спермии сохраняют подвижность до 2 месяцев, оплодотворяющую способность – в течение 1 месяца.

    Благодаря анабиозу расход энергетических ресурсов на процессы жизнедеятельности спермиев и накопление продуктов метаболизма резко тормозятся, что увеличивает срок их жизни вне организма.

    Это явление широко используется в искусственном осеменении. Достаточно сказать, что все существующие способы кратковременного и длительного хранения спермы основаны на создании и поддержании анабиоза.

    В настоящее время известно несколько методов создания искусственного анабиоза спермиев:

    -понижение температуры до +2…+4°С;

    - глубокое охлаждение спермиев (до -196°С);

    - снижение рН спермы до 6,3-6,4 применением органических кислот (угольная, лимонная и др.);

    - применение химических ингибиторов метаболических процессов в спермиях (хелатон и др.).

    4 Макро-микро оценка спермиев

    Макроскопическая оценка спермы (объем, цвет, запах, консистенция)
    Оценка качества свежеполученной спермы проводится по нескольким показателям. Определяют цвет, запах, консистенцию и объем эякулята (табл. 1). Если какой-либо показатель не соответствует норме, эякулят выбраковывают.
    Таблица1 Оценка качества свежеполученной спермы



    Микроскопическая оценка спермы (густота, активность, концентрация, процент патологических форм спермиев)

    Применяют метод визуальной оценки эякулята по густоте. В этом случае сперму относят к одной из следующих категорий: густая, средняя или редкая. К исследованию допускается сперма быков, хряков и жеребцов с оценкой густая (Г) и средняя (С), сперма баранов только густая (Г).

    Оценку на подвижность (активность) проводят в раздавленной капле, для чего на чистое подогретое предметное стекло наносят каплю свежеполученной спермы, накрывают ее покровным стеклом. Стекло помещается на электрообогревательный столик, установленный на предметном столике микроскопа. Визуальную микроскопическую оценку проводят в затемненном поле зрения при увеличении в 140 или 280 раз. При этом определяют не активность отдельных спермиев, а процент спермиев с прямолинейным поступательным движением (ППД) во всем поле зрения микроскопа. Результаты оценки выражают в баллах. Принята 10-балльная оценка, причем каждый балл соответствует 10% спермиев с ППД.

    Свежеполученная сперма считается пригодной, если её подвижность: не менее 8 баллов – для барана и быка, 7 баллов – для хряка и 6 баллов – для жеребца.

    Концентрация спермиев определяется в каждом эякуляте, эти данные необходимы для расчета кратности разбавления спермы, которая устанавливается с таким расчетом, чтобы в каждой дозе разбавленной спермы было предусмотренное ГОСТом число спермиев.

    Концентрацию спермиев можно определить несколькими методами: подсчетом в камере Горяева, по оптическому стандарту, при помощи фотоэлектроколориметра, электронным счетчиком частиц.

    Достаточно точным методом определения концентрации спермиев является подсчет в камере Горяева. Однако он утомителен и требует много времени – 15-20 мин. на оценку каждого эякулята. Поэтому в настоящее время он используется лишь как вспомогательный. Применение оптического стандарта основано на том, что чем больше мутность исследуемой спермы, тем выше концентрация спермиев. Этот метод легко и быстро выполним, но по точности значительно уступает прямому подсчету спермиев. Применение фотоэлектроколориметра (ФЭК-56 или КФК-2) позволяет оценить концентрацию спермиев за 1-2 мин.

    Концентрация спермиев определяется в млрд в 1 мл спермы. Допускается для использования сперма со следующей концентрацией: быка – 1-2 млрд/мл, барана – 2-4 млрд/мл, хряка и жеребца – 0,15-0,4 млрд/мл.

    Содержание патологических форм спермиев определяют периодически. На предметном стекле к капле спермы добавляют краситель (1-10%-ный водный или спиртовой раствор эозина) в соотношении 1:2 или 1:3. Смесь спермы с краской выдерживают 3-5 мин., после чего делают три мазка и просматривают их под микроскопом с иммерсионной системой.

    Подсчитывают 100-200 спермиев, выделяя патологические формы и определяя их процентное содержание. К ненормальным формам относят спермии с измененными головкой (уменьшенная, круглая, несимметричная, укороченная, асимметричная, заостренная, двойная, без чехла), шейкой (двойная или ломаная, наклоненная к телу), телом (изогнутое, ломаное, удвоенное, свернутое) или хвостом (изогнутый, двойной, с извитым и оголенным концом, скрученный). Максимальный процент патологических форм спермиев: у барана – 14, быка – 18, хряка – 20, жеребца – 25

    Лекция №3.Вопросы для самоконтроля


      1   2   3   4

    Коьрта
    Контакты

        Главная страница


    Курсовая работа (проект)